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探尋生命奧秘,蛋白免疫印跡(Western Blot)如一把生物學(xué)解碼器,為我們揭示蛋白質(zhì)的神秘面紗。它的原理簡單而玄妙,通過電泳分離、傳遞和檢測蛋白質(zhì),將微觀的生命活動呈現(xiàn)在實驗室的熒屏上。今天皮諾飛生物帶大家學(xué)習(xí)蛋白免疫印跡western blot的基本原理和實踐操作!
免疫印跡western blot實驗操作
簡介
免疫印跡,又被稱為蛋白質(zhì)印跡(Western blot,WB),是一種復(fù)合性的免疫學(xué)檢測技術(shù)。該方法通過利用SDS-PAGE技術(shù),在生物樣本中將蛋白質(zhì)分子根據(jù)其分子量在凝膠上進行分離,隨后通過電轉(zhuǎn)移的方式將這些蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)移到固相膜上。固相膜上的蛋白質(zhì)充當(dāng)抗原,與相應(yīng)的抗體發(fā)生免疫反應(yīng),接著與酶標(biāo)記的第二抗體發(fā)生反應(yīng)。最終,通過底物顯色或熒光成像等手段,檢測電泳分離的特異性目的基因表達(dá)的蛋白質(zhì)。
該技術(shù)被廣泛應(yīng)用于研究基因在蛋白質(zhì)水平的表達(dá)、檢測抗體活性以及早期診斷疾病等多個領(lǐng)域。
實驗原理
蛋白質(zhì)免疫印跡法,即Western Blot,基本原理涉及通過PAGE(聚丙烯酰胺凝膠電泳)對蛋白質(zhì)樣品進行分離,隨后將其轉(zhuǎn)移至固相載體,如硝酸纖維素薄膜(NC膜)或PVDF膜。固相載體以非共價鍵方式吸附蛋白質(zhì),同時能夠保持電泳分離的多肽類型及其生物學(xué)活性的不變性。
在該過程中,固相載體上的蛋白質(zhì)或多肽被作為抗原,與相應(yīng)的抗體發(fā)生免疫反應(yīng),隨后與酶或同位素標(biāo)記的第二抗體發(fā)生反應(yīng)。最終,通過底物顯色或放射自顯影等手段,實現(xiàn)對電泳分離的特異性目的基因表達(dá)的蛋白成分的檢測。
這一方法的關(guān)鍵在于其能夠通過將蛋白質(zhì)固定在固相載體上并與特異性抗體相互作用,從而實現(xiàn)對目標(biāo)蛋白的高靈敏度和高特異性檢測。這種分析手段在研究蛋白質(zhì)表達(dá)和功能、抗體診斷以及生物醫(yī)學(xué)研究中發(fā)揮著重要的作用。
應(yīng)用
(1) 從蛋白質(zhì)混合物中檢出目標(biāo)蛋白質(zhì);
(2) 定量或定性確定細(xì)胞或組織中蛋白質(zhì)的表達(dá)情況;
(3) 用于蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)、蛋白質(zhì)-DNA、蛋白質(zhì)-RNA相互作用后續(xù)分析;
實驗流程
WB常規(guī)實驗流程
步驟:
一、試劑準(zhǔn)備
二、蛋白樣品制備
三、蛋白含量的測定
四、SDS - PAGE電泳
五、轉(zhuǎn)膜
六、免疫反應(yīng)
七、化學(xué)發(fā)光,顯影,定影
八、凝膠圖象分析
實驗準(zhǔn)備
實驗材料:蛋白質(zhì)樣品。
試劑、試劑盒:裂解液 PBS G 250考馬斯亮藍(lán)溶液 NaCl SDS上樣緩沖液 電泳緩沖液 轉(zhuǎn)移緩沖液 麗春紅染液 封閉液 TBST TBS 洗脫抗體緩沖液 顯影液 定影液 抗體 化學(xué)發(fā)光試劑。
儀器、耗材:高壓鍋 玻璃勻漿器 高速離心機 分光光度儀 -20℃低溫冰箱 垂直板電泳轉(zhuǎn)移裝置 恒溫水浴搖床 多用脫色搖床。
實驗步驟
一、蛋白樣品的制備
1.單層貼壁細(xì)胞總蛋白的提?。?/span>
①去除培養(yǎng)液,并將培養(yǎng)瓶倒扣在吸水紙上,確保吸水紙充分吸取殘余培養(yǎng)液(或者將瓶直立放置片刻,使殘余培養(yǎng)液流至瓶底,然后用移液器吸?。?/span>
②向每個培養(yǎng)瓶中加入3 ml 4℃預(yù)冷的PBS(0.01 M pH 7.2~7.3)。輕輕搖晃培養(yǎng)瓶進行1分鐘的細(xì)胞洗滌,然后棄去洗液。重復(fù)上述步驟兩次,總共進行三次洗滌以去除培養(yǎng)液。將PBS棄凈后,將培養(yǎng)瓶放置于冰上。
③在冰上,向每瓶中加入1 ml裂解液,并加入10 μl PMSF(100 mM)。搖勻混合。(PMSF應(yīng)在無結(jié)晶的情況下?lián)u勻再與裂解液混合。)
④向每個培養(yǎng)瓶中加入400 μl含PMSF的裂解液,放置于冰上裂解30分鐘。為確保細(xì)胞充分裂解,要經(jīng)常來回?fù)u動培養(yǎng)瓶。
⑤裂解完成后,迅速用干凈的刮棒將細(xì)胞從培養(yǎng)瓶的一側(cè)刮下(動作迅速),然后用槍將細(xì)胞碎片和裂解液轉(zhuǎn)移到1.5 ml 離心管中。整個操作最好在冰上進行。
⑥在4℃下進行12000 rpm離心5分鐘(提前開啟離心機進行預(yù)冷)。
⑦將離心后的上清分裝至0.5 ml 離心管中,迅速轉(zhuǎn)移到-20℃保存。
2.組織中總蛋白的提?。?/span>
①取少量組織塊并置于1~2 ml 勻漿器的球狀部位,使用清潔的剪刀將組織塊徹底剪碎。
②向勻漿器中加入400 ml含有PMSF的單一去污劑裂解液,進行勻漿。隨后將勻漿器置于冰上。
③過幾分鐘后,再次進行碾磨,然后再次放置于冰上。這個過程需要重復(fù)幾次,以確保組織塊充分碾碎。
④裂解30分鐘后,使用移液器將裂解液轉(zhuǎn)移至1.5 ml 離心管中。隨后,在4℃下進行12000 rpm離心5分鐘,將上清液分裝至0.5 ml 離心管中,并存放于-20℃。
3.加藥物處理的貼壁細(xì)胞總蛋白的提?。?/span>
①將培養(yǎng)液轉(zhuǎn)移至1.5 ml 離心管中,進行2500 rpm 離心5分鐘。
②丟棄上清液,加入4 ml 冷卻至4℃的PBS,并輕輕使用槍進行吹洗,然后再次進行2500 rpm 離心5分鐘。丟棄上清液后,用PBS重復(fù)洗滌一次。
③使用槍將細(xì)胞洗凈后,向每個培養(yǎng)瓶中加入含有PMSF的100 μl裂解液,并進行在冰上的裂解,持續(xù)30分鐘。在裂解過程中,要定期輕輕彈動以確保細(xì)胞充分裂解。
④將裂解液與培養(yǎng)瓶中的裂解液混合后,在4℃下進行12000 rpm離心5分鐘。
⑤將離心后的上清液分裝至0.5 ml 離心管中,并迅速放置于-20℃保存。
二、蛋白含量的測定
(1) 制作標(biāo)準(zhǔn)曲線
①制備BSA溶液:
從-20℃取出1 mg/ml BSA,并在室溫下融化,備用。
②準(zhǔn)備離心管組:
取18個1.5 ml 離心管,按3個一組進行分組,并為每組分別標(biāo)記為0 μg,2.5 μg,5.0 μg,10.0 μg,20.0 μg,40.0 μg。
③添加試劑:
根據(jù)以下表格,在各個離心管中加入相應(yīng)的試劑。
④混勻步驟:
將混合后的樣品在室溫下放置2分鐘,以確保樣品充分混合。
⑤比色分析:
使用生物分光光度計(Bio-Photometer,Eppentoff)進行比色分析。
將混勻后的樣品分別加載到生物分光光度計的測量室。
通過設(shè)定合適的波長,測量吸光度,并記錄相應(yīng)的數(shù)據(jù)。
(2) 檢測樣品蛋白含量
①準(zhǔn)備考馬斯亮藍(lán)溶液:
取足量的1.5 ml 離心管,每管加入1 ml 4℃儲存的考馬斯亮藍(lán)溶液。在室溫下放置30分鐘,使其充分與蛋白發(fā)生反應(yīng)。
②制備空白樣品:
取一管考馬斯亮藍(lán),加入0.15 mol/L NaCl溶液100 μl?;靹蚝蠓胖?/span>2分鐘,作為空白樣品。將空白倒入比色杯中,按照標(biāo)準(zhǔn)曲線程序下進行測量。
③清洗比色杯:
棄空白樣品,用無水乙醇清洗比色杯2次(每次0.5 ml),然后用無菌水洗一次。
④測量樣品:
取一管考馬斯亮藍(lán),加入95 μl 0.15 mol/L NaCl NaCl溶液和5 μl待測蛋白樣品?;靹蚝箪o置2分鐘,倒入扣干的比色杯中,按照標(biāo)準(zhǔn)曲線程序下進行測量。
注意事項:
在每次測量樣品之前,都要用無水乙醇清洗比色杯2次,然后用無菌水洗一次。
可以同時混合多個樣品再一起測,以提高效率。測得的結(jié)果即為5 μl樣品所含的蛋白量。
三、SDS - PAGE電泳
(1) 清洗玻璃板:
①一只手扣緊玻璃板,另一只手蘸點洗衣粉輕輕擦洗。
②兩面都擦洗過后用自來水沖,再用蒸餾水沖洗干凈后立在筐里晾干。
(2) 灌膠與上樣:
① 將玻璃板對齊后放入夾中卡緊,然后垂直卡在架子上準(zhǔn)備灌膠。操作時要使兩玻璃對齊,以免漏膠。
② 配制10%分離膠,加入TEMED后搖勻即可灌膠。灌膠時,可用10 ml 槍吸取5 ml 膠沿玻璃放出,待膠面升到綠帶中間線高度時即可。加一層水,液封后的膠凝固更快。
③當(dāng)水和膠之間有一條折射線時,說明膠已凝。等3 min 使膠充分凝固,然后倒去膠上層水并用吸水紙將水吸干。
④配制4%的濃縮膠,加入TEMED后灌膠。將剩余空間灌滿濃縮膠,然后插入梳子。灌膠時膠要沿玻璃板流下,插梳子時梳子要水平。膠凝固時要在兩邊補膠,待濃縮膠凝固后,將梳子輕輕拔出。
⑤用水沖洗一下濃縮膠,將其放入電泳槽中。小玻璃板面向內(nèi),大玻璃板面向外,若只跑一塊膠,那槽另一邊要墊一塊塑料板,有字的一面面向外。
(3) 上樣:
①測完蛋白含量后,計算含50 μg蛋白的溶液體積即為上樣量。取出上樣樣品至0.5 ml 離心管中,加入5×SDS 上樣緩沖液至終濃度為1×。
②上樣前要將樣品于沸水中煮5 min使蛋白變性。
③加足夠的電泳液后,用微量進樣器貼壁吸取樣品,將樣品吸出不要吸進氣泡。將加樣器針頭插至加樣孔中緩慢加入樣品。
(4) 電泳:
電泳時間一般為4~5小時,電壓為40 V或60 V。電泳至溴酚蘭剛跑出即可終止電泳,準(zhǔn)備進行轉(zhuǎn)膜。
四、轉(zhuǎn)膜
(1) 膜的準(zhǔn)備:
①戴手套,準(zhǔn)備6張直徑為7.0~8.3 cm的濾紙和1張直徑為7.3~8.6 cm的硝酸纖維素膜。
②將硝酸纖維素膜浸泡于水中2小時,使用鑷子捏住膜一側(cè)輕輕放入水中,確保膜浮在水表面,避免形成氣泡層。
③將浸過水的膜取出晾干備用。手上的蛋白容易污染膜,因此切濾紙和膜時務(wù)必佩戴手套。
(2) 轉(zhuǎn)膜裝置的準(zhǔn)備:
①在搪瓷盤中放入轉(zhuǎn)膜用夾子、兩塊海綿墊、一支玻棒、濾紙和浸過的膜。
②將夾子打開,使黑色一面保持水平。在上面墊一張海綿墊,用玻棒反復(fù)搟幾次以排除氣泡,一手搟另一手要壓住墊子以保持固定。在墊子上疊放三層濾紙,用玻棒搟去其中的氣泡。
(3) 膠的處理:
①將玻璃板撬掉,小心撬除小玻璃板,刮去濃縮膠,注意避免刮破分離膠。
②將分離膠蓋在濾紙上,用手調(diào)整使其對齊,用玻棒搟去氣泡。將膜蓋在膠上,確保蓋滿整個膠,并排除氣泡。
③在膜上蓋3張濾紙并去除氣泡。然后蓋上另一塊海綿墊,搟幾下后合上夾子。整個操作在轉(zhuǎn)移液中進行,不斷搟去氣泡。確保膜兩邊的濾紙不相互接觸,以避免短路。轉(zhuǎn)移液含甲醇,操作時要戴手套,保持實驗室通風(fēng)。
(4) 電轉(zhuǎn)移:
①將夾子放入轉(zhuǎn)移槽中,確保夾子的黑色一面對著槽的黑面,夾子的白色一面對著槽的紅面。槽的一側(cè)放置冰塊來降溫,因為電轉(zhuǎn)移會產(chǎn)生熱。
②電轉(zhuǎn)移一般使用60 V轉(zhuǎn)移2小時或40 V轉(zhuǎn)移3小時。
(5) 膜的染色:
①轉(zhuǎn)移完成后,將膜用1×麗春紅染液染5分鐘,使用脫色搖床搖動。
②用水沖洗去沒染上的染液,觀察膜上的蛋白。將膜晾干備用。
五、免疫反應(yīng)
(1) 封閉和初步洗膜:
①將轉(zhuǎn)膜用TBS(三倍體積)從底部向上浸濕。
②移至含有封閉液的平皿中,室溫下在脫色搖床上搖動1小時。
(2) 一抗處理:
①將一抗用TBST稀釋至適當(dāng)濃度,準(zhǔn)備好在1.5 ml 離心管中。
②在實驗臺面上撕下適當(dāng)大小的保鮮膜,并用水浸濕四角,使其平整。
③將抗體溶液均勻涂抹在保鮮膜上。
④從封閉液中取出膜,用濾紙吸去殘留液后,將膜蛋白面朝下放在抗體液上。
⑤輕輕掀動膜的四角以排出殘留氣泡。
⑥在室溫下孵育1~2小時后,用TBST在脫色搖床上洗兩次,每次10分鐘。
⑦再用TBS洗一次,10分鐘。
(3) 二抗處理和最終洗膜:
①用類似的步驟準(zhǔn)備二抗稀釋液。
②將二抗溶液均勻涂抹在膜上,室溫下孵育1~2小時。
③用TBST在脫色搖床上洗兩次,每次10分鐘。
④再用TBS洗一次,10分鐘。
⑤進行化學(xué)發(fā)光反應(yīng)。
六. 化學(xué)發(fā)光,顯影,定影
(1) 混合試劑與膜接觸:
①在保鮮膜上等體積混合試劑A和B。
②等待1分鐘,將膜蛋白面朝下與混合液充分接觸。
③過1分鐘,將膜移到另一張保鮮膜上,去盡殘液,包好,并放入X-光片夾中。
(2) 顯影與定影:
①在暗室中,將1×顯影液和定影液分別加入塑料盤中。
②在紅燈下取出X-光片,使用切紙刀剪裁適當(dāng)大?。ū饶さ拈L和寬均需大1 cm)。
③打開X-光片夾,將X-光片放在膜上,一旦放上,不能移動,關(guān)上X-光片夾,開始計時。
④根據(jù)信號強弱調(diào)整曝光時間,通常為1分鐘或5分鐘,也可選擇不同時間多次壓片,以達(dá)到較佳效果。
⑤曝光完成后,打開X-光片夾,迅速浸入顯影液中顯影。待出現(xiàn)明顯條帶后,立即終止顯影。顯影時間一般為1~2分鐘(20~25℃)。溫度較低時需適當(dāng)延長顯影時間。
⑥顯影結(jié)束后,將X-光片浸入定影液中,定影時間一般為5~10分鐘,以膠片透明為止。
⑦用自來水沖去殘留的定影液后,室溫下晾干。
注意事項:顯影和定影時移動膠片時,盡量拿膠片一角,避免手指甲劃傷膠片,以免影響結(jié)果。
七、 凝膠圖象分析
使用凝膠圖像處理系統(tǒng)對蛋白免疫印跡實驗的膠片進行掃描或拍照,以進行目標(biāo)帶的分子量和凈光密度值的分析。
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